2019年5月5日日曜日

米国ではVarroaのダニが蔓延しています


米国ではVarroaのダニが蔓延しています

[1996 Wenner、AM、WW Bushing。米国ではVarroaのダニが蔓延しています。ビー文化124:341〜343]。
エイドリアンM ウェナーとウィリアム・Wブッシング
17世紀初頭、養蜂家たちはヨーロッパのミツバチをアメリカに紹介し、この国の植物と昆虫の関係を永遠に変えました。以前は、ハチドリ、マルハナバチ、他の在来蜂(主に孤独)およびさまざまな昆虫が在来植物を受粉させていました。他の非常に多くの侵入種と同様に、ミツバチはすぐに開花植物の生態系における主要な要因となりました。
最初の導入から300年以上経って、養蜂家も数十年間存在していた検疫にもかかわらず、おそらくブラジルからミツバチを輸入しました(そして非常に深刻な問題)。その人は検疫を破った最初の人ではありませんでした。残念ながら、今回輸入されたミツバチは、すぐにすべての隣接する州とアラスカに住むために貪欲な寄生ダニ、Varroa jacobsoniを抱えていました
1987年9月に、フロリダからウィスコンシンに輸送されたいくつかの巣箱のコロニーはコロニー不全を経験しました - この国で最初に記録されたVarroa寄生のケース。秋に全国のスポットチェックはすでにダースの州でVarroaダニの存在を明らかにしました。
フロリダは最初の導入ポイントだったようです。その後の女王や小包の配給、そして養蜂家による植民地の移動(例えば受粉や越冬のため)は、全国へのVarroaのダニの拡散を早めました地域レベルでは、群れの動き、弱体化した巣箱の奪取、コロニー間の偶発的なドリフト、コロニー間の無人移動の自由、花を訪れるハチによるダニの移動がすべて、急速に起こる、ほぼ普遍的な侵入の一因となりました。
米国でのスプレッドをチェックしようとする試みは、少なすぎて遅すぎました。この国で多数の発見された発見が発表された後、ほとんどの州の当局者は明らかに突然発見された新しい発見の記録をやめた - おそらく避けられない広範囲に及ぶ災害のスピードに圧倒された。サンフォードが書いたように、「…養蜂家たちは、私たちが拡大しているものや[規制当局]がダニについて何を言っているのか信じていませんでした。このように、彼らは何の処置もしなかった、そしてそれから非常に多くのコロニーを失うことによって驚いた…」
米国だけでなく他の地域でも、急速で世界的に広がる広がりが、ほぼ全員を驚かせました。1975年には早くも、AkratanakulとBurgettは、Varroaのダニによって引き起こされた脅威についての警告を発表しました。
過去半世紀の間に管理されている蜂のコロニーの減少。 1985年以降の突然の急落は、Varroaのダニの初出現と一致しています。 この図は、Hoff and Willett(1994)によって公表されたものから改作されたものです。
過去半世紀の間に管理されている蜂のコロニーの減少。1985年以降の突然の急落は、Varroaのダニの初出現と一致しています。この図は、Hoff and Willett(1994)によって公表されたものから改作されたものです。

急速な米国の広がり
米国でのVarroaの侵入の最初の数年間、特にStephen Bambara(ノースカロライナ州立大学Entomology)、I. Barton Smith(米国の養蜂士検査官)、Jim Pheasant(USDA / APHIS)の間でかなり広範囲の記録を残している人もいます。 )電子メールネットワーク(例えば、BEE − L)を介してブロードキャストされたクエリは、さらに他の情報をもたらした。最後に、Bee Cultureが州別にリソース担当者を発表(1995年4月)したことで、文書化されていない地域の関係者に連絡を取り、それによって残りのギャップを埋めるための情報が得られました。
収集された情報により、各州で最も早く知られているVarroaダニの確立を示す複合地図を作成することができましたそのマップを研究することで、推定分布パターンについて推測することができます。いくつかのケースでは、レポートは互いに矛盾しませんでしたが、そのような競合は1年以上異ならなかった。
地図には表示されていませんが、カナダではVarroaのダニ蔓延を免れていません。1980年代後半に、ニューブランズウィック州とマニトバ州の米国国境に沿って孤立した症例が発生しました。1992年までにマニトバで、1993年にニューブランズウィックで、Varroaは数回の作戦で設立されたように見え、その後(1993年)ブリティッシュコロンビア州南部で越冬した植民地の中でアルバータ州で発見されました。1994年に発見された他のアルバータ州は、米国との国境から離れたブリティッシュコロンビア州の地域で越冬したコロニーを含む養蜂場で発生しました。1995年までに、より一般的な発見がアルバータ州、マニトバ州、ノバスコシア州、およびサスカチュワン州のいくつかのミツバチ作戦から記録された。しかし、カナダの養蜂家のほとんどは、依然としてこれらのダニの影響を受けていません。
過去数十年の間に、米国で維持されているミツバチのコロニーの数は、主に気管とVarroaのダニの寄生の複合効果の結果として急落しました1945年から1990年の間に、管理されたコロニーの数は以前の半分のレベルにまで減少しました。しかし、その状況は農業への荒廃の本当のレベルを表していません。すべての兆候から、ハチの巣のコロニー(下記参照)は、Varroaのダニの侵入のあらゆる分野で事実上消滅しています
アメリカ合衆国の州による国内コロニーの最初の記録された発生の年。 Varroaのダニの蔓延は、ウィスコンシン州とフロリダ州で最初に気付かれましたが、1〜2か月以内に、他の10州で検査がダニの存在を明らかにしました。
アメリカ合衆国の州による国内コロニーの最初の記録された発生の年。Varroaのダニの蔓延は、ウィスコンシン州とフロリダ州で最初に気付かれましたが、1〜2か月以内に、他の10州で検査がダニの存在を明らかにしました。

野生のミツバチの貯水池
おそらく何年も前から存在していた野生ミツバチのコロニーの駆除により、気管とVarroaのダニの侵入はほとんどの都会の庭師と他の生産者にとっての主な受粉源を排除しました。しかし、それらの「野生の」蜂が以前居住していた空洞は、近くの管理コロニーからの群れ、それらの複合寄生虫負荷のために時間とともに弱まりそして死ぬであろう野生のコロニーから繰り返し満たされるようになることができます。カリフォルニアのハチ研究者であるRobbin Thorpは、このかなり急速な空洞の再占領とそれに続く死を、野生個体群の「年次化」と呼んでいます。
ダニは漂流して蜂を襲って管理コロニーと野生コロニーの間を自由に移動するので、再利用された空洞のかなり一時的な野生コロニーは近くの管理コロニーの汚染のためVarroaダニの源を提供するそれ故、この状況は商業的コロニーを効果的に管理するための努力を複雑にする。養蜂家は、オイルパテやアピスタンストリップを慎重に使用することで、ダニ寄生虫の管理された巣箱を大幅に過疎化させることができますが、近くの新しく再建された野生のコロニーはその処理によって影響を受けません。放棄する群れの場合、ダニが多すぎるとコロニーがしばしば消滅するため、ダニの負荷はかなりのものになる可能性があります。
野生のコロニーの急速なダニの蓄積はすぐに彼らの初期の死と悪循環につながります。その後、非常に蔓延し弱体化した野生コロニーは、管理コロニーからのミツバチによって奪われ、管理コロニーのより頻繁な殺ダニ処理が必要になります。Varroaのダニ駆除努力のための統一されたプログラムの欠如は問題を悪化させます、その理由は、侵入がまた異なる養蜂家によって管理される養蜂場の間で行ったり来たりすることができます。さらに、(明らかに起こるように)アピスタンの細片の誤用は、フルバリネート耐性ダニをもたらすことが予想され得る。
将来の見通し
新たに発生した問題のたびに、米国およびその他の地域で養蜂はますます困難になっています。腐敗したペスト、それに続く無差別な農薬の使用は、世紀半ばに養蜂業を荒廃させました。毎回、養蜂は何とか固執した人々のために利益や喜びを回復し、供給することに成功しました。
しかしながら、気管ダニおよびVarroaダニ(特に後者)の流入は、以前に直面したものよりはるかに大きい問題を提起する。すべての適応症から、気管ダニ耐性蜂の系統を育種することができ、それらが寄生虫とそれらの蜂宿主との相互作用についてのより深い理解を得るにつれて、これまでになくそれ以上の能力を発揮することができます。それとは対照的に、Varroaのダニは幼虫、蛹および成虫の血液を摂食し、驚くほど速く繁殖することができます。つまり、ミツバチのコロニーがそれらの損失を置き換えることができる速度よりも速いのです。
Varroa耐性ハチを繁殖させることはできますか?ここでの主な問題は、事実上すべてのハチの系統が実際にはかなり高度に交配しているという事実から生じています。すなわち、女王が異なる遺伝子構成の無人偵察機のスコアとほぼ空中で交尾するとき、結果として生じるコロニーは多くの異なる特性を有する。コロニーのミツバチのうちのいくつかのごく一部は、Varroaのダニのコロニーを駆除するのに適した衛生的な行動をしているのでしょうそのような便利な機能を見つけて分離することは、状況下では手ごわい仕事です。
また、管理されたコロニーと野生のコロニーが混在する集団で自然を辿らせることで、Varroa耐性株を見つけることに大きな成功を期待することはできませんこの線に沿って私たちの最善の希望は、多くの野生のコロニーからなるいくつかの比較的孤立した集団を見つけて、経時的にVarroaの侵入の進行を追跡することですこれらのコロニーのうちのどれかが生き残るならば、それらは地域外からの他の蜂の輸入によって汚染から隔離されて保たれれば繁殖材料の源として役立つことができます。
私たちは現在、サンタクルーズ島と(うまくいけば)サンタカタリナ島(南カリフォルニアの沖合にある2つの大きな島)でこの可能性(抵抗)を調べています。近隣の本土からの物質によるサンタクルス島のミツバチ株(現在は非常に均質な株)の汚染は遠いように思われる。我々はまだについて十分知らないのサンタカタリナ島その人口は可能性を持っている可能性があるかどうかを判断するためにミツバチの操作をサンタカタリナ南カリフォルニアの海岸沖にある2つの大きな島。近隣の本土からの物質によるサンタクルス島のミツバチ株(現在は非常に均質な株)の汚染は遠いように思われる。その人口がVarroa耐性の可能性があるかどうかを判断するためにサンタカタリナ島ミツバチ操作についてまだ十分に知りません
気管ダニVarroaダニの出現で、養蜂家は彼らが以前に練習した相対的自由を受け入れる程度を再考しなければならないかもしれません。個人としての私たちは、もはや個々の植民地、さらには養蜂場の健康に専念することはできません。我々は今や飛行範囲内の全ての管理されたコロニーと野生のコロニーのシステム全体の汚染に対処しなければならない(ファウルブルの初期の流入と同様に)。たぶん、管理されたハチの操作や野生のコロニーの間でダニの寄生が急増しないようにするために、地域全体で調整されたアピスタンの適用または他の治療を課す必要があるかもしれません。
代替案は?私たちは、すべての養蜂検査プログラムをやめて、強い植民地であろうと最も資源のある養蜂家であろうと、ただ生き残ることができました。この最後のアプローチの危険性は、もちろん、私たちが自分たちのコロニーを生かしておくために何でもしようとする人々によって汚染された蜂蜜と蜜蝋を生産する可能性に終わることがあるということです。
ダニの検出とコロニー処理
コロニーの中のVarroaのダニをさまざまな方法で検出できますが、他のものより効果的なものもあります。
  1. 数時間の間、Apistan®ストリップをヒロの巣に入れてから取り除きます -その間に落下するダニを捕まえるために粘着性のある板(例えば、植物油でコーティングされたもの)をヒバの櫛の下に置きます。
  2. キャッピングスクレーパーでそれらを槍から出して持ち上げることによって、高度なドローン蛹を検査します。
  3. 最近空になった子房細胞のダニの糞の蓄積を探します。
  4. 標準的なエーテルロール技術を使用してください - 植物油と石英ガラスの瓶使用して、数百蜂を落として、瓶にエーテルを(自動供給店から)スプレーして、瓶を回転させて、瓶の壁に付着したダニを探します。植物油とガラス瓶、数百の蜂を落とし、瓶の中にエーテルを(自動供給店から)スプレーし、瓶を回転させ、そして瓶の壁に付着したダニを探す。
  5. 横の付箋カード(蜂が噛みつかないように粗いスクリーンがかぶせられている)を滑り込ませて、数日ごとにそれを調べながら、それをひだの櫛の下に保ちます。
  6. 若い蜂が巣箱の上を歩き回っている間に、ダニを探します。
  7. 穴のあいたキャッピングで細胞から抽出された進行段階のドローンの一群を調べます。
  8. 地上の巣箱と外で変形した若い蜂を探します。
世界中の養蜂家は、Varroaのダニを駆除するために多数の化学処理剤(タバコの煙、フルバリネート、ギ酸)を使用しています、しかし合衆国の人々は合法的にプラスチックストリップに組み込まれたフルバリネートだけを使用できます(Apistan®)。カナダとドイツでは、ギ酸を合法的に使用することもできます。これは安価ではあるが非常に危険な物質で、特に効果があるとは限りません。
参考文献
Bach、JC ダニ駆除の最良の結果を得るために、Apistanのラベルの指示に従ってくださいアメリカンビージャーナル135(10):685−686。1995a アメリカンビージャーナル135(10):685−686。1995a
バッハ、JC アピスタンを乱用しないでくださいBee Culture :123(10):590、593。1995b。Bee Culture:123(10):590、593。1995b。
クレーン、E 養蜂の考古学ニューヨーク州イサカのコーネル大学出版局。1983年
エリクソン、EH Varroaによって寄託された糞便の蓄積は、このミツバチ寄生虫の寄生のための単純な圃場診断として使用することができますアメリカンビージャーナル136:63〜64。1996年。アメリカンビージャーナル136:63〜64。1996年
ホフ、フロリダ州とLSウィレット。 米国の養蜂業USDAアグリ。経済報告#680。1994年
クラウス、BとREページ。 カリフォルニアの野生の Apis mellifera(膜翅目、ミツバチ科に対する Varroa jacobsoni(Mesostigmata、Varroidae)の影響環境昆虫学 24:1473〜1480。1995年
Matheson、A。 世界ミツバチ健康レポートビーワールド 74:176〜212。1993年
Matheson、A. Varroa jacobsoniの最初の発見された発見、その推定自然範囲外であったApiacta。30:1-8。1995年
Mobus、B、およびC. de Bruyn。 新Varroaハンドブックノーザンビーブックス。スカウトボトムファーム、ミスロムロイド。GB 1993年
モース、R 研究のレビュー(あまりにも多くの近親交配?) ビー文化124:15〜16。1996年、ハチの文化124:15〜16。1996年
カリフォルニア大学サンタバーバラ校の生態学、進化、海洋生物学科の名誉教授(自然史)は、サンタクルス島でミツバチの研究を続けています。同じ部門のブッシュ氏は、地理情報システムの海洋生息地への応用に関する博士研究を終えています。彼は現在、カタリナ島保護委員会の科学、教育、および生態学的修復の責任者を務めています。自然カリフォルニア大学サンタバーバラ校の生態学、進化、海洋生物学科で、サンタクルス島でミツバチの研究を続けています。同じ部門のブッシュ氏は、地理情報システムの海洋生息地への応用に関する博士研究を終えています。彼は現在、カタリナ島保護委員会の科学、教育、および生態学的修復の責任者を務めています。
この記事には多くの人が意見を述べました。特に、Steven Bambara、I. Barton Smith、Shimanuki Hachiro、Jim Pheasant、Tom Sanford、Robbin Thorp、およびKenn Tuckeyに感謝します

はじめの養蜂用品一覧最初の機器およびサプライ品




https://beesource.com/how-to-start-beekeeping/

最初の機器およびサプライ品
主要なサプライヤであるDadant、W.T.Kelley、Brushy Mountain、Mannlake、Betterbee、Miller Bee Supply、Rossman Apiariesのすべてにカタログを依頼することをお勧めします。また、出荷コストを計算してください。ツールに精通している養蜂家の中には、1つの巣箱に必要なものを注文し、その巣箱をテンプレートとして他の巣箱を構築する人もいます。

はじめの養蜂用品一覧
取扱説明書:C.P.Dadantによる養蜂の最初の教訓
ハイブの屋根と天井用の伸縮式カバーとインナーカバー
ハイブの床用のScreed Bottom Board(アイピーエム)
入口レジューサ:ミツバチが定着し、大型の入口でコロニーを防御できるようになるまで、玄関ドアのサイズを縮小します。
ハイブの壁の(各5個)
Medium Frames(各50個):ハイブ内の部屋のようなものです。コームを持ちます。通常は、フレームごとに1枚使用します。多くの人は、最初に必要な数よりも多くのフレームを購入するため、将来の購入の送料を節約できます。
Small Cell Foundation(アイピーエム):ハチが巣を作成するためのテンプレートを提供します。フレームごとに1枚。
フィーダー:コロニーの確立を支援するために、コロニーに砂糖水を供給する必要があります。
Smoker–ミツバチを検査するときに煙を使うのは良い習慣です。煙がミツバチを落ち着かせ、方向感覚をなくし、扱いやすくします。
Hive Tool–最初は必要ないが、ミツバチが巣を作りプロポリス化すると、ツールがコンポーネントの分離を助ける。
防護服–ベールは、ハチを扱う際に最低限必要な防護です。ジャケット/ベールの良いオプションがいくつかあります。また、作業中はスタイを着用することをお勧めします。最善の防護のためには、ヴェールとカバーオールがいいでしょう。
手袋–多くの人が手袋なしで始めることや、手袋を使うのをやめることを勧めているが、それでも便利だ。換気されている手袋の網戸を刺される可能性があるので、換気されていない手袋が好まれます。大きめで厚みのあるピッグスキンと袖付きゴム製の養蜂手袋がベストです。
Nucs:「ヌック」とは、通常のハイブよりも小さいサイズで、より少ないフレーム数を保持できるように設計されたものです。ミツバチの数を減らし、空間を狭くすることで、子育てに欠かせない巣の温度や湿度を管理しやすくするのが狙いだ。
追加のお気に入り–フレームパーチ、フレームグリップ
警告-Typarの雑草ブロッカーを使用しないでください。蜂はそれを食べようとしますが、使用できません。
また、お金を使いすぎるのはとても簡単です。勉強したり、買い物をしたり、質素に買い物をしたり。




モンゴルJICA養蜂マニュアル -30℃で地下に埋めて半年越冬させる

http://www.jaicaf.or.jp/fileadmin/user_upload/publications/FY2017/Beekeeping_Manual.pdf


穴を堀り中に巣箱をいれる(0℃)レンガの上にのせ草などを詰めて保温、換気のため塩ビ管などを取り付け、防水のためシートをのせ上に雪が降り積もる(保温効果)。気温はマイナス30℃まで下がるがこれで半年は越冬させる。

カナダオンタリオ州養蜂冬季調査2018 越冬失敗率は46%、ダニ剤はアピバール、シュウ酸、ギ酸がよくつかわれる

オンタリオ州冬季損失調査2018

http://www.omafra.gov.on.ca/english/food/inspection/bees/2018winterloss.htm目次

オンタリオ州2017養蜂家レポート

2017地方アピアリストレポート






PDF形式のレポートについてはapiary@ontario.caに連絡してください。


2019年5月4日土曜日

ダニとミツバチの健康 バロアはコロニーの損失の一部を説明できますか

ダニとミツバチの健康

https://www.apidologie.org/articles/apido/full_html/2010/03/m09176/m09176.html

バロアはコロニーの損失の一部を説明できますか?
Yves Le ConteMarion Ellis and Wolfgang Ritter  April 2010

要約

病害虫防除のための一般的な最良管理手法(BMP) カナダオンタリオ州政府環境・食糧・農村地域省



http://www.omafra.gov.on.ca/english/food/inspection/bees/2017-treatment.htm#GBMP

ミツバチヘギイタダニ:バロアダニ 感染レベルのサンプリングとモニタリング

バロアダニ 感染レベルのサンプリングとモニタリング



https://www.ontariobee.com/sites/ontariobee.com/files/document/Copy-of-varroa-sampling-EN.pdf

http://www.omafra.gov.on.ca/english/food/inspection/bees/varroa-sampling.htm


バロアダニ 感染レベルのサンプリングとモニタリング 2012年4月
オンタリオ養蜂家協会ONTARIO BEE BREEDERS ASSOCIATION 

はじめに

ミツバチにとって最も深刻な脅威となっているのは、バロアダニである。
バロアは比較的大きな外部寄生者で、成体や生育中のミツバチ体液を吸う。ミツバチに寄生する間,バロアは身体的損傷を引き起こし,ミツバチを弱化させ,様々な病原体,特にウイルスを伝播する

ほとんどの場合、ミツバチのコロニーにバロアダニが侵入すると、コロニー全体が死滅する。




養蜂家は全て養蜂の季節を通してミツバチの群落の健康を管理する。

これには通常、化学的処理(訳者注:合成ダニ剤の使用)が必要である。
また、養蜂家は、バロアの寄生率を監視し、寄生レベルが有害なしきい値以下に保たれていることを確認することが不可欠である。コロニーにおけるバロアの寄生レベルを定量化できることも重要である。ミツバチのコロニーのバロアを採取するには3つの方法がある。

ミツバチのコロニーにおけるバロアの異なる3種のサンプリング法:
1.アルコール洗浄
2.エーテルロール
3.スティッキーボード

注意:過去には、VarroaはVarroa jacobsoniという種名で知られていた。別段の定めがある場合を除き文献ではバロアの物理的記述は成虫の雌段階を指す。


検出と診断
• バロアは典型的にはミツバチのコロニーの巣に集中しており、フタをされたサナギの中に存在する。重度の寄生では,働き蜂(図1)の表面にバロアダニが観察されることがある。

(訳者注:つまり目視でハチの背中にバロアダニが乗っかているのを見た時点で、群全体が重度に寄生されている可能性が高いと認識すべきということ。通常バロアダニはミツバチのフタがかかったサナギ(特にオスバチを好む)の中に寄生し大量繁殖するので見ることはない。ハチの羽化とともに外に出た場合でも成体ミツバチの腹側の腹節の隙間に寄生することも多いのでこの場合は見えづらい。バロアの感染が疑われる場合は、目視では判定できないので以下に示すアルコール洗浄方法、エーテルロール方法、スティッキーボード(粘着板)方法の3種の方法で寄生率を調べ、場合によっては直ちに治療をする必要がある。ちなみにシュガーロール法はここでは推奨されていない。

• バロアダニは暗赤色で楕円形をしており,長さ1.0~1.5 mm,幅1.5~1.9 mmで体の前方に八本の小さな足をもつ。マダニはゴマの種子と同じくらいの大きさと形をしているので、肉眼で見ることができる(図2)。

高レベルの感染はコロニーを弱めることがある。
多くの働き蜂が、羽のちぢれ変形などウイルス感染症状を示し入口の中や外を這っているのを見た。
この段階でのコロニーの損傷は深刻なので(図3)、コロニー内のバロアを検出するにはこの方法ではありません。

訳者注:目視で明らかにわかる前に調べ、必要であればただちに治療しなければならない。ちぢれ羽などの目で見えるわかりやすいウイルス感染症状のハチが現れれば重度のダニ寄生で、他の治療法がないウイルス性の病気が蔓延しており、ハチそのものはたくさんいて一見順調に育っているように見えるが実質的に崩壊状態のことも多い。その場合すぐにハチが死ぬことは無いが、寿命は短くなり徐々にハチ数が減少し、越冬の失敗や逃去につながる)。


バロア感染率を調べるためミツバチを巣から集めるには2つの方法があります

• 養蜂家は蜂箱から直接蜂を揺らして鍋に入れ、容器にすくってしまう(図4)。
• 養蜂家はまた、容器をフレームの表面上で静かに走らせ、フレームを下向きに30°傾けてハチが容器の中に落ちるようにして、ハチをフレームから直接集めることもできる(図5)。


アルコール洗浄方法(1/3)

1.コロニーの育房から働き蜂(約300匹のミツバチ)をカップ半分集める。よく密閉した容器に蜂とアルコール (70%)を入れる

2.アルコールが容器内のミツバチを完全に覆い、ミツバチの表面から約2cmの高さになるようにする。

3.容器内の試料を激しく二分間振り混ぜ、働き蜂(図6)の体からバロアを除く。

4.死んだミツバチ、ダニ、アルコールの混合物を1/8インチの金網布に流し込み、受け皿または受け皿の上に網目の金網をかぶせて、より小さいバロアからミツバチを濾す。容器又は容器は、内反がバロアに見えるように、淡色又は透明であること。

5.容器や鍋の中のバロアダニを数える。3で割り感染率を求める。

たとえば、300匹のハチのサンプルに3匹のバロアが含まれているとすると、3/300=1/100、つまり1%が寄生していることになる。

6.死んだ蜂を捨て、容器を水で洗い、試料間のダニを取り除く。

効果的で迅速な結果を与える携帯型で使いやすい市販のダニ振盪機が入手可能である。

振動装置の指示に従ってください。入手方法については、お近くのハチ用品販売店にお問い合わせください。

必要な材料:鍋、カップ、1⁄2カップ、1/8インチの金網または金網、鍋またはバケツ、アルコール、水、ノート、ダニ用シェーカー。

エーテルロール方法(2/3)
1.コロニーの育房から働き蜂(約300匹のミツバチ)をカップ半分集める。

2.サンプルが採取されたら、養蜂家はミツバチのコロニーから少なくとも10フィートは離れるべきである。なぜなら、エーテルはミツバチを興奮させるからである。
ハチをしっかりと密閉されたクォートガラスの瓶に入れ(石工用の瓶は非常によく動く)、エンジン始動液を容器に三回スプレーします(図7)。

3.瓶(行ったり来たりして)を1分ほど振ります。瓶の横に沿って何回か転がします。

4.瓶の側面や蓋の下に付着しているダニを数えます。結果を記録します。垂直線をマークする
数え始めと終わりを記録するために瓶に沿って。

5.死んだ蜂を捨て、容器を水で洗い、試料間のダニを取り除く。

スティッキーボード方法(3/3)
必要な材料:
1クォートのガラスメーソンジャー;食器洗浄手袋;エンジン始動液噴霧;パーマネントマーカー;水の容器;本とペンを記録する。
スティックボード方法

1.重い紙(40x 29.5 cm)に格子状に印をつけて、数えやすいようにします。レターサイズのフォルダーは、優れた付箋紙です。ヤスリを開いて平らにし、片方を5cmくらい切る。コロニーに印をつける
番号を入力します。

2.(数式を貼り付ける)を均等に塗工する。クリスコと植物油またはワセリンを組み合わせて紙をコーティングすることもできる。

3.粘着板を育房の下、理想的にはスクリーン下板(1/8インチの金網または金網を使用)の下に挿入する。スクリーン下部ボードがない場合は、ハードウェアクロスまたはワイヤメッシュを粘着ボードの上に直接置きます。配膳トレイに1枚1枚付箋紙を置いておくと、養蜂場への出入りに便利です。次に、トレイをボックス内に交互に積み重ねてもよい(図8)。

4.ボードは、24、48、または72時間後に回収する必要があります。平均3日のダニの落下の方が確実なので、1日より3日の方がいいです。期間を24時間で割ります。たとえば、72時間で36匹のダニが落下した場合、3で割る必要があるので、24時間あたり12匹になります。結果を記録します。新しいボードは、異なるサンプル(図9)に使用する必要があります。

必要な材料:
ボール紙、粘着材、スクリーン底板、拡大鏡、ノート、ペン。



エーテルロールとアルコール洗浄方法
1回の診察で結果が得られる。
• 結果はすぐに表示されます。
• コロニー間の比較には、標準化された数のハチ(300)が理想的である。
• ハチの少量のサンプルを殺します

スティックボード方法
• 蜂は殺さない。
• 治療中のダニの落下をモニターできます。
• 非常に低いレベルでダニを検出します。
• サンプルを入手するため養蜂場に戻らなければならない
• コロニーの大きさやミツバチの行動(グルーミング能力と衛生行動能力の群の差)によって結果はさまざまである。
• ミツバチに依然として存在するダニのレベルを評価しない。下盤のサンプルには大量のダニが落下しているかもしれませんが、これはハチに残っているはるかに大きな個体群を表しているだけかもしれません。

治療しきい値
以下は治療ガイドラインである。これらの示唆されたレベルはコロニーの強さ,養蜂場の位置および管理に依存して変化する。治療の適切なタイミングを決定する最善の方法は、定期的にモニターし、結果を比較することである。

注意:治療すべきバロア感染レベルは以前の勧告から下げている(より厳しくなっている)。バロア感染率が表2に示す値以上の場合に治療する。

方法 エーテルロール
5月のバロアダニ数 1%以上
8月のバロアダニ数 2%以上

方法 アルコール洗浄方法
5月のバロアダニ数 2%以上
8月のバロアダニ数 3%以上
(訳者注:これ、厳しい数字ですよね、趣味養蜂家で守れている人いるんでしょうか。検査自体もなかなかできないですしね。ダニの知識不足や採蜜後は放置して群を崩壊させている人いますね。今は常に検査し複数の手段でバロアの治療をしなければ越冬できず1シーズンもちません。手間とお金がかかる時代でーす。)

方法 スティックボード方法
5月のバロアダニ数 9匹落下/24時間以上
8月のバロアダニ数 12匹落下24時間以上



バロアダニの治療時期
どのような場合に使用するか

養蜂家は少なくとも年に2回、春先と晩夏に調査すべきである。これにより、治療期間の直前のバロアの個体群がわかる。養蜂家は、(バロアダニの寄生率が高く)特にコロニーが弱くストレスを感じているように見える場合には、真夏にサンプルを採取することも考慮する。

養蜂家が治療を行ったとしても、コロニーは外部のダニ源(周辺集落)から再感染する可能性がある。
養蜂家はまた、処理がコロニー内のダニの数を減らすのに有効であったかどうかを決定するために、処理の前後にサンプルを採取することを考慮してもよい。

1回の操作でいくつのコロニーをサンプリングするかを決定することは困難である。理想的には、養蜂家はすべてのヤードですべてのコロニーをサンプリングすべきである。

しかし、すべての養蜂家がそのための時間と資源を持っているわけではない。各ヤードから数個のコロニーを採取し、全ての養蜂場から採取する。個々のミツバチ園とミツバチのコロニーは、働きバチの個体群で個々のコロニーが異なるのと同じように、バロアのレベルが異なる。



バロアダニは、カナダのオンタリオ州で越冬のミツバチ(セイヨウ)の死やコロニー数を減少させる主因である

バロアダニは、カナダのオンタリオ州で越冬のミツバチ(セイヨウ)の死やコロニー数を減少させる主因である

要約

ミツバチのコロニーの冬の死亡率と冬後の個体数に及ぼす寄生者のレベル,ハチの個体数サイズ,および食物貯蔵量の相対的な影響を推定した。カナダのオンタリオ州で400以上のコロニーを三シーズンにわたってモニターした。コロニーの大部分は,秋(75.7%)にダニが寄生されたが,ノゼマと気管アカリンダニに対してそれぞれ27.9%と6.1%のみが陽性であった。冬季のコロニー死亡率は27.2%であり,全ての罹患率因子の割合として調べた場合,秋のバロアダニ寄生がコロニー死亡率(コロニー死の85%以上に関連する)の主要原因であり,次いで秋のミツバチ個体群と食物貯蔵が多かった。秋には個体群が弱く餌の貯蔵量が少ないバロアに寄生されたコロニーは,春のコロニー数を有意に減少させたが,春にはバロアの寄生とノセマの感染は,初夏までにハチの個体数を有意に減少させた。全体的に,結果は,バロアダニが北部気候における越冬ミツバチコロニーの死亡と個体数減少の主な原因である可能性を示唆する。



概要 冬眠の喪失およびミツバチのコロニーの巣箱に対する寄生の程度、個体群の強さおよび飼料の相対的な影響を推定した。カナダのオンタリオ州の6つの異なる地域で400以上のミツバチのコロニーが秋、春、初夏に検査されました。大部分のコロニーは秋にVarroaダニに感染していた(75.7%)が、気管ダニまたは鼻血症について陽性と判定されたのは6.1%および27.2%の人々のみであった。冬の死亡率は27.2%で、生き残った人々はミツバチと食料の約半分を失いました。冬季には痘瘡の蔓延は減少したが、春には蜂1匹あたりの鼻孔の蔓延は317倍に増加し、310万胞子を超えた(表I)。しかし、倒壊したミツバチのコロニーと生き残ったミツバチのコロニーとの間に鼻の侵入に違いは見られなかった。冬の間に入ったハチのコロニーは、生き残った人々よりも前の秋のハチや飼料の量がかなり少なく、ダニの侵入が多かった(P <0.001、表II)。 6地域間で死亡率に差があった:最も高い死亡率を持つ3地域は最も低い損失を持つ3地域よりもかなり多くのダニの影響を受けていた(P <0.0001)。冬の喪失に対するそれらの重要性に関して個々の要因を評価すると、大部分の人々の喪失は、Varroa蔓延(> 85%)と相関し、続いて蜂の個体群(> 69%)と食料在庫(> 67%、表III)と相関した。 、秋には、飼料と蜂の個体群は春のハニカム数と有意に正の相関があり、一方、varroaの蔓延はこれらの変数と負の相関があった(P <0.0001)。初夏のハチの個体数と春のハニカムの数との間にも有意な正の相関があった(P <0.001)。 Varroaダニによる春の外寄生と鼻の外寄生は夏のハチの個体数と負の相関があった(P <0.001)。 全体として、結果は、Varroaダニが越冬性ハチコロニーの生存に対して大きく負の影響を与えることを示しています。さらに、varroa蔓延、nosema蔓延および弱い人々の組み合わせは、北部の気候におけるミツバチのコロニーの春の発達に大きな影響を及ぼす可能性があります。これらの結果は、秋のVarroa個体数が少ないことと、栄養価の高い蜂のコロニーが繁殖することの重要性を強調しています。





https://www.apidologie.org/articles/apido/abs/2010/04/m09037/m09037.html

養蜂家のためのカナダオンタリオ州における越冬のベストの方法


http://www.omafra.gov.on.ca/english/food/inspection/bees/bmpwinter.htm

養蜂家のためのカナダオンタリオ州における越冬のベストの方法


現代の養蜂で越冬に成功するには、ミツバチのコロニーの徹底した管理が必要である。養蜂家は、オンタリオ州におけるミツバチコロニーの屋外および屋内での越冬のための最善の管理方法を実施すべきである。

世界の温帯地域におけるミツバチのコロニーは,冬の不活発な期間に管理されている。冬の生存率を最適化するために,ミツバチのコロニーは十分な健康,体力および食料貯蔵を確保するように管理されなければならない。どの養蜂でも、冬の間は常に損失がある。持続可能な養蜂経営の鍵は、この冬の損失レベルをできるだけ低く、理想的には15%以下に抑えることである。

この文書では、養蜂家が越冬するミツバチのコロニーを屋外と屋内の両方で越冬させる際に従うべき、OMAFRAのベストプラクティスの勧告について概説します。本文書は、ミツバチの越冬施設を建設して運営するための詳細な指示書を意図したものではなく、またミツバチのコロニーが越冬による損失を受けないことを保証するものでもない。

オンタリオ州の越冬中のミツバチコロニーに対する最良の管理方法(BMP)

オンタリオ州におけるミツバチコロニーの屋外と屋内の両方での越冬のために、養蜂家は以下の最良の管理方法を実行することが推奨される。

1ミツバチのコロニーには十分な餌がなければならない。十分な餌を提供することで、健康で人口の多いコロニーが餓死する可能性を最小限に抑えることができる。
冬になる前に、ミツバチのコロニーは、単一の巣箱で少なくとも32kgまたは70ポンド、二段の巣箱で少なくとも45kgまたは100ポンドの重さでなければならない。
通常、フルサイズのコロニーは15リットルまたは4ガロンの補助飼料を必要とする。
秋に収穫されたハチミツを取り除いた直後に、コロニーに餌を与えなければならない。
コロニーには,白糖と水の比率が2対1の濃厚なシロップまたは70%ショ糖を与えるべきである。



2ミツバチのコロニーは、冬にむけ個体数を増やさなければならない。ミツバチは自分の体を断熱材として使っているので、ミツバチの大きな群れは、エネルギーや餌をあまり使わなくても、冬の間は温度を保つことができます。コロニーの数が多ければ多いほど、越冬に成功する可能性が高くなります。


・オンタリオ州の寒冷地域では、フルサイズのコロニーを形成した7~8枚群のハチが理想的である。


3養蜂シーズンを通してミツバチの害虫と病気(特にミツバチヘギイタダニ;バロア)を管理し、冬になる前に害虫の感染率が処理しきい値以下になるようにする。

・ミツバチのコロニーに処置が必要な場合は、適切な法的に登録された処置を選択し、ラベルの指示に従って適用する。
早く治療してください。冬の生存率を最適化するためには,バロア感染レベルが晩夏と初秋で3%以下であることが重要である。


屋外越冬
4屋外に置かれたミツバチのコロニーは断熱されなければならない。
・冬用のミツバチのコロニーを、紙、厚紙、断熱プラスチック、発泡スチロール又は木屑を詰めた木箱のいずれか又はこれらの組合せを用いて包装し又は絶縁する。
・断熱または防風のために、材料をコロニーの外側または周囲に配置する;巣門の幅を縮小する;十分な換気を確保する。


屋内越冬
5ミツバチのコロニーを収容する施設は、温度管理のシステムを備えていなければならない。

・越冬するミツバチのコロニーを収容する構造内の温度は、約5°C±1°Cに維持されるべきである。この温度範囲より下では、ミツバチは彼らの食物貯蔵をより多く消費し、この範囲より上では、ミツバチは過度に活動的になる可能性がある。
・施設の温度を維持するために温度制御システムを使用することを推奨する。
・緊急時には予備電源を使用する。




6屋内貯蔵施設は適切に換気されなければならない。

ミツバチのコロニーは呼吸中に大量の水分,熱および二酸化炭素を産生する。屋内で複数のコロニーが越冬する場合は、保管施設の換気を十分に行い、水分、熱及び二酸化炭素を除去しなければならない。
・換気装置は、新鮮な空気を建物内に取り入れ、建物内の空気を十分に混合し、湿った空気と停滞した空気を排気しなければならない。


7室内貯蔵施設はできるだけ暗くしておかなければならない。

ミツバチは光によって刺激される。従って,ミツバチが乱されないように,光,騒音,振動および他の刺激を最小にすることが重要である。
・以下の1つまたは複数の組み合わせを使用して、光を最小化または回避する必要があります。

排気口などの開口部の周囲にライトトラップ(光源を利用した虫のトラップ?殺虫器?)

建物に入るためのドアのセットが二つ(覆い?カバー?)

赤い屋内照明(必要な場合にのみ使用される)

窓の覆い

Best Management Practices (BMP) for Ontario Beekeepers' in Advance of Winter


Successful wintering in modern beekeeping requires thorough management of honey bee colonies. Beekeepers should implement best management practices for both outdoor and indoor wintering of honey bee colonies in Ontario.
Honey bee colonies in temperate regions of the world are managed for a period of inactivity during winter. To optimize winter survival rates, honey bee colonies must be managed to ensure adequate health, strength and food stores. In any beekeeping operation, there will always be some losses during the winter. The key to any sustainable beekeeping operation is keeping this level of winter loss as low as possible, ideally below 15 per cent.
This document outlines OMAFRA's recommendations for Best Management Practices that beekeepers should follow when wintering honey bee colonies, both outdoors and indoors. This document is not intended as a detailed set of instructions to build and operate a wintering facility for honey bees, nor guarantee honey bee colonies will not experience overwinter losses.

Best Management Practices (BMPs) for Wintering Honey Bee Colonies in Ontario

It is recommended that beekeepers implement the following best management practices for both outdoor and indoor wintering of honey bee colonies in Ontario.
  1. Honey bee colonies must have sufficient feed. Providing sufficient food stores will minimize the chances of starvation for a healthy, populous colony.
    • Prior to winter, honey bee colonies should weigh at least 32 kilograms or 70 pounds for a single brood chamber and 45 kilograms or 100 pounds for a double brood chamber.
    • A full sized colony typically requires 15 liters or 4 gallons of supplement feed.
    • Colonies must be fed immediately after the fall honey crop is removed.
    • Colonies should be fed thick syrup of either a 2-to-1 ratio of white sugar to water or 70 per cent sucrose.
  2. Honey bee colonies must be populous going into winter. Bees use their own bodies as insulation, therefore a large cluster of bees will be able to keep warm during the winter without using as much energy and feed. The more populous the colony, the more likely it is to make it to spring.
    • In cold regions of Ontario, seven to eight frames of bees in a full sized colony are ideal.
  3. Manage honey bee pest and disease (in particular varroa mites) throughout the beekeeping season and ensure that pests and disease are below treatment thresholds in advance of winter.
    • If honey bee colonies require treatment, choose the appropriate, legally registered treatment and apply according to label instructions.
    • Treat early. To optimize winter survival rates, it is crucial that varroa levels are below the 3 per cent threshold in late summer and early fall.
    Please refer to OMAFRA's treatment recommendations for more information.


    Outdoor Wintering

  4. Honey bee colonies kept outdoors must be insulated.
    • Wrap or insulate honey bee colonies for winter using one, or a combination, of the following materials: paper, cardboard, insulated plastic, styrofoam, or wooden boxes filled with wood shavings.
    • Place the material on or around the exterior of the colony for insulation/windbreak; reduce the size of the colony entrance; and ensure adequate ventilation.

    Indoor Wintering

  5. The facility housing the honey bee colonies must have a system for temperature control.
    • The temperature inside the structure housing wintering honey bee colonies should be maintained at approximately 5°C plus or minus 1°C. Below this temperature range, honey bees may consume more of their food reserves and above this range, honey bees may become overly active.
    • It is recommended that a temperature control system is used for maintaining the temperature of the facility.
    • A back-up power supply should be used in case of emergency.
  6. The indoor storage facility must be adequately ventilated. Honey bee colonies produce large amounts of moisture, heat and carbon dioxide during respiration. When multiple colonies are wintered indoors, there must be adequate ventilation of the storage facility to remove moisture, heat and carbon dioxide.
    • The ventilation systems must bring fresh air into the building, thoroughly mix the air in the building and exhaust moist and stagnant air.
  7. The indoor storage facility must remain as dark as possible. Honey bees are stimulated by light. Therefore, it is important that light, noise, vibrations and other stimuli are minimized so that the honey bees are not disturbed.
    • Light should be minimized or avoided by using one, or a combination, of the following:
      1. Light traps around openings such as vents
      2. Two sets of doors for entry to the building (vestibule)
      3. Red interior lighting (only used when necessary)
      4. Window coverings
Resources - More information can be found using the following resources:

Varroa Mites(バロア、ミツバチヘギイタダニ)の駆除 ギ酸シュウ酸

Varroa Mites(バロア、ミツバチヘギイタダニ)


http://www.omafra.gov.on.ca/english/food/inspection/bees/2017-treatment.htm

バロアダニはミツバチの外部寄生体であり,寄生レベルの上昇は活動期のコロニーにおけるストレスの症状をもたらす可能性がある。

モニタリング方法:
・粘着板、エーテルロール、アルコールウオッシュの3つの方法を用いて、バロアのコロニー寄生率をモニターすることができる。
・6月、8月、初秋に治療を行った後、任意のモニタリング方法を用いて全ての養蜂場(それぞれ5個群以上)をチェックし、治療効果を判定する。
・詳細については、www.ontario.ca/beekeeping.の情報シート 「Varroa Mite Sampling and Monitoring」 を参照してください。


治療法:
・バロアダニの寄生が春にはミツバチの2%以上,晩夏から秋には3%以上になる場合にコロニーを治療する。



 処理法  時期  方法
 65%液体ギ酸単回処理:
ピン穴あきバッグに入った250ml

65%液体ギ酸複数処理:

二階建てコロニー用30~40ml
平屋コロニー用15~20ml
春か秋  ・この治療法を用いるには、蜂で覆われた6枚以上のblood育児枠が必要である。
・ラベルの指示に従って、巣箱の巣門以外のすべての穴をふさぎ、保護具を使用します。
・パッドを育児エリアの上にある枠の上に置きます。治療は3~5日間隔で6回まで繰り返す。21~30日間放置。
・気温が10°C~26°Cのときのみ使用し、日中の気温が30°Cを超える場合は、パッドを外してください。
・とても小さな群の場合は、育児枠を巣箱の端に移動させ、巣室の枠の中央に吸収パッドを置く。 
 Mite Away Quick Strips™ (MAQS™)
ギ酸ゲル剤ストリップ
 いつでも  ・この治療法を用いるには、蜂で覆われた6枚以上のblood育児枠が必要である。
・ラベルの指示に従って、巣箱の巣門以外のすべての穴をふさぎ、保護具を使用します。
・治療期間は7日間です。治療と治療の間には1カ月間の期間を設ける。
・本剤の使用は気温が10~26°Cの場合に限る。なお、
収穫前の蜂蜜は、処理後2週間以内に採取してはいけません。
・はちみつの流蜜期、養蜂の盛んな時期でもいつでもお使いいただけます。
 化学合成ダニ剤
Apivar®*、Apistan®、またはBayvarol®
 春か秋  ラベルの指示に従い、その混合物がミツバチに使用できることを表示しなければならない。

Apivar®およびApistan®は、5フレームごとに1枚使用します。バイバロール®は、育すう室当たり4枚のストリップを使用する。

気温が低いときに処理する場合は、ストリップがクラスターと接触するコロニー内に配置されていることを確認する。

処理期間の終了時にストリップを除去し、ストリップを再利用しない。
 チモバール  春か秋  ラベルの指示に従い、その混合物がミツバチに使用できることを表示しなければならない。

完全な治療には連続2回の適用が必要である。

気温が13°C~30°Cのときのみご使用ください。
 オスバチトラップ 晩春か夏  オスバチ用巣礎または空のオスバチ用スヒの1~2枠を育中巣箱に挿入する。

コロニー内では、オスバチを孵化させないでください。オスバチ卵、幼虫がフタをされた後、成虫のオスバチが孵化し現れる前に、オスバチを含む巣枠を巣箱から取り除く(孵化するまで約21日間)。

この作業を繰り返して、秋の初めまでコロニーからオスバチを追い出す。
 スクリーンボトムボード  春か秋  8メッシュスクリーンをボトムボードに組み込みます(2.54 cmあたり8個)。

スクリーンと下盤の間に2.54×1.27 cmの間隔が必要である。

この方法はバロア制御を強化するかもしれないが、追加の処理方法なしではダニの寄生を実質的に減少させることはできない。
 シュウ酸
滴下処理
 晩秋  バロアモニタリングにより治療が必要と判断された場合に適用する。

早期秋処理と併用し、blood卵、幼虫、さなぎがほとんどまたは全くない場合にのみ使用します。ハチミツが入っている継箱では使用しないでください。

ラベルの指示に従って、保護具を使用してください。

シュウ酸二水和物35gに砂糖の1:1溶液から得た加温した予備混合シロップ1Lを加えて溶かし(ウェイト:ボリューム)、よく攪拌する。
上部枠からミツバチに煙をする。

枠と枠の間あたりシュウ酸溶液5mlを注射器を用いてフレーム間の蜂に直接滴下する。

ミツバチが巣に集まっている涼しい日に使用してください。
最高用量は一群当たり50ml(小さい養蜂箱ヌーク、単箱または複数箱の巣箱でもすべて同用量)である。

シュウ酸は、コロニーにストレスを与える。コロニーが弱かったり、越冬状況が悪かったりすると、死に至ることがある